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                产品中心
                技术支持

                常见问题

                一些常见问题及其答案:

                1. 问:ChIP-seq实验的成功率有多高?

                   答:成功率取决于多种因素,包括所用抗体的特异性和亲和力、细胞类型、染色质制『备的质量以及测序技术的准确性。有经验的实验室通常能获得较高的成功率。


                2. 问:需要多少起始材料?

                   答:起始材料的量取决于细胞类型∮和预期的目标富集程度。通常需要数百万个细胞作为起始材料。


                3. 问:抗体选择有多重要?

                   答:非常重要。高质量、特异性强的抗体对于〓实验的成功至关重要。应选择经过验证、针对感兴趣的蛋白具有高亲和力和特异性◥的抗体。选择我们首页-产品中心-ChIP级抗体里◢的抗体,可以满足您的实验要求。


                4. 问:实验中最容易出错的步骤是哪一步?

                   答:染色↑质的剪切、免疫沉淀和DNA的回收是最容易出错的步骤。操作需要精确,防止样品降解或污染。


                5. 问:我如何确定我的数据是可靠的?

                   答:通过使用对照样品(如未处理的样品或使用非特异性抗体的样品)来验证结果。此外,重复实验和深入的数据分析也是确保数据可靠性的关键。如果您对您的数◆据可靠性有所担忧,可设置实验的技术重复和生↙物学重复环节。


                6. 问:我该如何处理和分析ChIP-seq数据?

                   答:数据处理包括质量控制、序列比对、峰值检测等步骤。可以使用多种生物信息学工具和软件进行分析。对▲于初学者来说,可能需要一些学习和实践,或者寻求专家的帮助。当然,我们也提供标准化和差异化的数据分析服务,我们有专业的生物信息分析团队处理您的数据,详情请移步首页-技术服务-计算生物学专栏。



                7. 问:对于难转染的细胞,应该如何提高其转染效率?转染效率又该如何确定?

                   答:1)对于贴壁细胞,采用转染试剂转染即可;

                   2)对于比较难转染的细胞,为提高转染效率,可选购特殊要求的转染试剂或者使用电◥转的方法,

                      但是由于电转的方法对细胞损伤比较大,该方法未必是最佳的;

                   转染效率的确定,常用的是⌒使用荧光标记的siRNA,通过荧光显微镜,共聚焦显微镜,流式细胞

                   仪检测等方法,但最终以达到基因过表达或者干扰的效率为准∑ 。


                8.  问:基因为什么要强调mRNA水平检测?可以直接检测蛋白和功能吗?

                A:常规的基因检测需要做到mRNA水平和蛋白水平同时说明,对于RNAi实验,由于siRNA直接作

                   用于mRNA,因此mRNA水平检测是最直接在指标。

                   一般认为,mRNA的降解直接的结果应该是对应蛋白质含量的下降,所以在蛋白水平的检测结果

                   也应该可以作为有效性的检测指标。实际情况往往出现mRNA下降水平与蛋白下降水平不对应的现象。

                   可能原因有:

                   1)检测时间:存在mRNA的下降尚未反映在蛋白量的变化上或者未达到足以检测的可能,一般建

                      议蛋白和功能检测时间做调整退后。

                   2)蛋白在细胞中的表达情况:mRNA的翻译过程非常复杂,细胞内基因的表达总要维持一个平衡,

                      某些蛋白表达量到一定的程度之后,足以维持其细胞功能,将可能「暂时“关闭”表达的功能,转

                      录出来的部※分mRNA可能不参与蛋白翻译的过程,因此,mRNA水平的下调与蛋白水平下调并非

                      完全成正相▆关的关系。

                   3)另外还可能会涉及到更加复杂的机制。


                9.  问:RNAi中转染时该如何分组?分组的目的是什么?

                    答:A组(必需) 针对目①的基因siRNA knockdown目的基因的表达

                   B组(必需) 阴性对照siRNA 用非特异的siRNA序列证明RNAi作ω 用的序列特异性

                   C组(必需) 转染试剂对照 排除转染试剂对细胞的毒性或对目的基因表达的影响

                   D组(必需) 空白对照 用于检测实验过程中细胞的生长状态

                   E组(可选) 阳性对照siRNA 用于排除实验体系和实验操◎作的问题

                   F组(可选) 荧光对照siRNA 用于转染效率判断,当不明确细胞转染效率时,这一组为必需。


                10. 问:RNAi效率多高才是好的靶点?

                    答:没有明确的界定,干扰效率高低因不同的细胞类型和不同的基因而异。不同细胞类々型的转染效率

                    也不尽相同,不同基因的表达水平也相差较大,主要看█干扰效果而定。


                11.  问:基因沉默/过表达效果不理想,应该如何处理?

                   答:最常见的影响沉默效果的两个原△因是:转ㄨ染效率低和siRNA序列设计的效果不理想。如果您初次

                   使用siRNA或采用了新的←细胞系,并发现沉默效果不佳,我们建议您对转染效率进行检测,并选择

                   优化转染【条件。如果您已经对实验转染条件进行优化但是问题依然存在,我们建议您换用另一种转

                   染试剂或是采用其他技术,这也许↓能提高转染效率。如果已经提高了转染效率但是沉默效果仍然未

                   达到要求,可能√是因为siRNA序列设计的效果不理想。


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